Carlos Alberto Canaval Ocampo Bacteriólogo y Laboratorista Clínico, John Harvy Cortes Olmos Bacteriólogo y Laboratorista Clínico, Angélica María Cifuentes Barrios Microbióloga énfasis Veterinario.
BIOMET LABORATORIO, Laboratorio clínico veterinario.

Objetivo

Describir la metodología a seguir para el análisis de determinación de parásitos intestinales por la técnica de microscopía directa. Adicionalmente, relacionar los hallazgos clínicos en los pacientes evaluados.

Alcance

El estudio aplica para cualquier muestra de materia fecal de caninos de la ciudad de Cali, durante el primer semestre del año 2019 analizados en Biomet Laboratorio.

Generalidades

Los quistes, trofozoitos, ooquistes, huevos y larvas pueden ser identificados en un frotis delgado de heces en un portaobjetos. El análisis microscópico de materia fecal debe ser visto por un analista de laboratorio con experiencia en los parásitos intestinales exclusivos por especie y con la formación académica necesaria; El laboratorio define como requisitos mínimos profesionales en bacteriología y laboratorio clínico o microbiología con énfasis veterinario, con un periodo mínimo de capacitación de 3 meses y su respectiva evaluación y autorización previa para generar informes de resultados.

Interferencias

No se observan interferencias significativas.

Conservación de la muestra

Materia fecal reciente, recolectada en un envase limpio y seco. Los parámetros analizados en la muestra son estables 2 horas a temperatura ambiente (25ºC a 30°C), si no es posible cumplir con el tiempo de análisis, refrigerar (2ºC a 8°C) y analizar en el menor tiempo posible. Biomet Laboratorio tiene establecido un periodo máximo de 3 horas desde la toma de la muestra hasta su análisis, siempre y cuando este bajo temperatura de refrigeración. No exponer la muestra a temperaturas extremas, luz solar directa o desecamiento.

Procedimiento

Se analizaron 2400 muestras de materia fecal de caninos en el periodo comprendido entre los meses de enero a junio de 2019 procedentes de la ciudad de Cali, las muestras a elección fueron de aspecto líquido o diarreico. Antes de hacer el análisis microscópico de cada muestra de heces fecales, se definió color, consistencia y presencia de elementos atípicos; adicionalmente se observó la presencia de parásitos de mayor tamaño (por ejemplo: Oxiuros, Ascaris sp. y parásitos intestinales artropódicos), y además de formas vegetativas de otros parásitos (por ejemplo: proglótides de tenías y larvas). Se realizaron 2 preparaciones por muestra con solución salina y lugol respectivamente. Se analizó cada frotis empezando en una esquina moviendo el portaobjetos hasta llegar a la esquina opuesta haciendo el movimiento de reversa traslapando el campo y continuando hasta que el frotis fue examinado en su totalidad.

Resultados

1080 muestras de materia fecal fueron positivas, presentando hallazgos en parásitos intestinales de interés clínico; 1320 muestras de materia fecal fueron negativas para parásitos intestinales. Presentamos los resultados obtenidos:

EL 55% de las muestras analizadas fueron negativas para parásitos intestinales, encontrando flora bacteriana normal (13%) y presencia de bacterias de interés clínico como Campylobacter sp. (48%) y Clostridium sp. (39%). En el 45% de las muestras restante fueron encontrados 5 parásitos intestinales predominantes con una alta presencia de huevos de Ancylostoma sp. (55%), seguido de Giardia sp. (26%), Toxocara canis (9%), Isospora sp. (5%), Dipylidium caninum (3%) y otros (2%) como Trichuris vulpis, Taenia sp.  y Strongyloides stercolaris.

Conclusión

La estadística presentada nos indica que en las muestras recepcionadas por Biomet Laboratorio procedentes de la ciudad de Cali, existe una alta prevalencia de 2 parásitos intestinales en pacientes caninos (Ancylostoma sp. y Giardia sp.). Estos resultados invitan a todos los actores involucrados con los pacientes, a implementar estrategias de prevención, diagnóstico y tratamiento de estas dos patologías.

Referencias

• Protocolo de análisis de determinación de parásitos intestinales por microscopia directa LAB-004-1.
• Coloración ANTONHY IHR Diagnóstica. Coloración para parasitología en MF.
• Métodos de Laboratório Clínico en Medicina Veterinária de Mamíferos Domésticos. Helmut Kraft con la colaboración de Dieter Schillinger.
• Veterinary Parasitology, Reference Manual, Fifth Edition. William J. Foreyt.